蛋白提取及含量测定试剂准备1.74mg/ml(10mmol/L)PMSFPMSF0.174g异丙醇100ml溶解后，分装于1.5ml离心管中，－20℃保存单去污剂裂解液（50mmol/LTris·HClpH8.0，150mmol/LNaCl，1％TritonX－100，100mg/mlPMSF）：1mol/LTris·HCl（pH8.0）2.5mlNaCl0.438gTritonX－1000.5ml蒸馏水至50ml混匀后，4℃保存。使用时，加入PMSF至终浓度为100mg/ml（0.87ml裂解液加入1.74mg/mlPMSF50μl）。G250考马斯亮蓝溶液（测蛋白含量专用）考马斯亮蓝G250：100mg95％乙醇：50ml磷酸：100ml蒸馏水至1000ml配制时，先用乙醇溶解考马斯亮蓝染料，再加入磷酸和水，混匀后，用滤纸过滤，4℃保存。0.15mol/LNaClNaCl（MW58.44）0.877g蒸馏水至100ml高温灭菌后，室温保存。100mg/ml牛血清白蛋白（BSA）BSA0.1g0.15mol/LNaCl1ml溶解后，－20℃保存。制作蛋白标准曲线时，用0.15mol/LNaCl进行100倍稀释成1mg/ml，－20℃保存。操作步骤：（一）蛋白样品制备（1）单层贴壁细胞总蛋白的提取：1、倒掉培养液，并将瓶倒扣在吸水纸上使吸水纸吸干培养液（或将瓶直立放置一会儿使残余培养液流到瓶底然后再用移液器将其吸走）。2、每瓶细胞加3ml4℃预冷的PBS（0.01MpH7.2～7.3）。平放轻轻摇动1min洗涤细胞，然后弃去洗液。重复以上操作两次，共洗细胞三次以洗去培养液。将PBS弃净后把培养瓶置于冰上。3、按1ml裂解液加10mlPMSF（100mM），摇匀置于冰上。（PMSF要摇匀至无结晶时才可与裂解液混合。）4、每瓶细胞加400ml含PMSF的裂解液，于冰上裂解30min，为使细胞充分裂解培养瓶要经常来回摇动。5、裂解完后，用干净的刮棒将细胞刮于培养瓶的一侧（动作要快），然后用枪将细胞碎片和裂解液移至1.5ml离心管中。（整个操作尽量在冰上进行。）6、于4℃下12000rpm离心5min。（提前开离心机预冷）7、将离心后的上清分装转移倒0.5min的离心管中放于－20℃保存。（2）组织中总蛋白的提取：1、将少量组织块置于1～2ml匀浆器中球状部位（或者在1.5ml离心管中加入少量裂解液，将其剪碎），用干净的剪刀将组织块尽量剪碎。2、加400ml(250ul)单去污剂裂解液裂（含PMSF）于匀浆器中，置于冰上进行匀浆。3、几分钟后再碾一会儿再置于冰上，要重复碾几次使组织尽量碾碎。4、裂解30min后，即可用移液器将裂解液移至1.5ml离心管中，然后在4℃下12000rpm离心5min，取上清分装于0.5ml离心管中并置于－20℃或－70℃保存。（3）加药物处理的贴壁细胞总蛋白的提取：由于受药物的影响，一些细胞脱落下来，所...
