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全骨髓法分离培养大鼠MSCs实验指导(1).pdfVIP免费

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大鼠骨髓间充质干细胞培养干细胞是一类具有自我更新能力的多潜能细胞,在一定条件下,它可以分化成多种功能细胞或组织器官,医学界称其为“万用细胞”,干细胞的增殖保证了机体内的动态平衡。骨髓间充质干细胞是存在于骨髓基质中的非造血干细胞,能在体外或体内分化为成骨细胞、软骨细胞和脂肪细胞。源于自体骨髓的间质干细胞能够很好地避免异体间移植的免疫排斥反应,在临床上,已经成功地将骨髓间充质干细胞移植到患者体内,用于治疗骨组织缺损和心肌梗塞等疾病。本实验根据骨髓中间充质干细胞的贴壁生长,而血细胞和造血干细胞悬浮生长的特性用贴壁法将其分离开来,此方法得率高、操作简单、无需特殊试剂,已广泛应用于科研工作中。一、实验前准备实验开始前,将眼科剪刀、眼科镊子、培养皿,15ml离心管、移液管、移液枪、枪头等放入无菌超净工作台,以紫外线照射30min。选取SPF级,体重100~150g左右的SD大鼠,断颈处死。将大鼠置于体积分数为75%的乙醇中浸泡5min。工作台紫外消毒后,采用通风机通风3min。以75%酒精擦拭操作台和双手。无菌条件下,准备好大剪刀、止血钳、眼科剪刀、眼科镊子、干净培养皿。将大鼠仰卧在超净台内的干净培养皿上。二、全骨髓提取眼科镊沿腹股沟处提拉大鼠皮肤,眼科剪刀剪开腹股沟皮肤,暴露腿部肌肉,从关节处将大鼠大腿剪下。除去骨表面附着的软组织,置于另一无菌培养皿中。假如在平时操作中,剪刀不易将骨表面肌肉组织剔除干净,可采用无菌纱布擦拭,可方便的将肌肉组织剔除干净,提高所分离细胞的纯度。用无菌PBS浸泡清洗。眼科剪剪断两端骨骺,显露骨髓腔,放置于10ml含体积分数为10%胎牛血清的新鲜DMEM完全培养液的无菌培养皿中,取出1mL注射器,用镊子钳起骨头的一端,并用注射器吸取完全培养液冲洗骨髓腔至另一培养皿中,由一段骨髓腔冲出骨髓,重复3次,再反方向冲出骨髓,重复3次。直至骨髓腔冲洗液变清亮后停止。三、细胞制备吹打细胞悬液,以便分散细胞,收集骨髓悬液于15mL离心管中,1000r/min室温离心5min。四、接种培养离心后去上清,用6mL完全培养液重悬,轻轻吹打,制成单细胞悬液,转移至25cm2培养瓶中,轻轻摇匀;置于37℃、体积分数为5%的CO2饱和湿度培养箱中培养。24小时后,镜下观察,可见细胞浓度极大,全为球形的大鼠骨髓中的血红细胞,如堆积的沙粒状,悬浮于培养液中并有少量血红细胞相互聚集发生。换液,去除漂浮的血细胞,以后每两三天换液1次,直到增殖达到融合。约7天后,倒置显微...

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