第一部分线栓模型制作1、实验器材（从左到右）：第一行：干棉球、酒精棉球、10％水合氯醛＋注射器、碘伏＋棉签第二行：三种不同粗细的鱼线（鱼线最好在2.0、2.5mm处各用记号笔作好标记，便于观察进入距离）、弯盘内为手术器材第三行：记号笔、自制拉钩（皮筋+曲别针＋大头针）2、麻醉：可用饮料瓶自制捕鼠器（适用于不敢手抓大鼠的），用于打麻药，根据大鼠的重量选择不同粗细的饮料瓶（太粗了大鼠可在瓶中回头）。效果图3、麻倒后绑在手术台上。4、剪去颈前的鼠毛，碘伏消毒。5、沿经部正中切开皮肤。说明：切开皮肤前最好将结扎动脉的线事先剪好（后面会用到）。6、钝性分离皮下组织。如图：大鼠腹侧可见事先剪好的结扎线。7、分离到气管前肌后，沿右侧胸锁乳突肌腱向下分离，见到颈动脉鞘后可上拉钩。8、分离动脉鞘。如图：分离好后见光滑的颈总动脉。9、分离出颈总、颈外、颈内动脉，结扎颈总、颈外动脉，注意中间那根线不要系紧，用来插鱼线时防止出血的。10、夹闭颈内动脉，用眼科剪将颈总动脉剪一小口。11、插入鱼线，鱼线进入颈内动脉后按图中注释方法插（成功率在90%以上）。说明：（1）这一步鱼线选择是关键，根据大鼠重量（作的多了后根据动脉粗细就可选择了）选鱼线。我们的经验是：250g以下的选0.26mm的线，250-300g的选0.26mm蘸腊的或0.28的都可以。（2）如果遇到鱼线怎么也查不进去的情况，可让大鼠休息一会，换细点的鱼线再试，这种情况不一定都是进到翼腭动脉了，我曾解剖过4例这种情况的大鼠，有三例都是在如颅的地方卡住了，可惜我们手里没有0.24mm的鱼线。（3）通过实践，我们认为结扎或夹闭翼腭动脉没有必要，按我们的方法，熟练的话，从切开到缝合完毕也就是15分钟，算上准备工作（如麻醉、消毒等）半小时也可以搞定了，这样一上午两人作10只大鼠不成问题。（4）我们体会最好用蘸腊的鱼线作模型，好处是进线深度控制的好，不容易出现蛛网膜下腔出血。我们曾试过0.26mm的鱼线（不带腊）在250g以下的大鼠进入深度足有2.5cm12、成功后结扎中间那根线，可见第一个标记距动脉分叉约2mm。13、缝合。14、缝好后用酒精棉球消毒皮肤缝合处。15、缝好后的效果如图，外面的鱼线最后用记号笔涂黑，便于再灌拔线时观察。16、将大鼠放回笼内。17、2小时再灌。18、醒后看效果，左爪不能伸展（完全醒后可见绕圈或追尾、倾倒），我们的体会，症状2-3分的死亡率高，1-2分的死亡率低，有的大鼠第二天或几天后可无明显症状，但取脑后还是有梗死灶...
