siRNA导入细胞的策略siRNA导入哺乳动物细胞的策略RNAi在哺乳动物细胞中通常用于阻断特定基因的表达从而研究基因的功能。成功的进行RNAi的问题在于使siRNA导入细胞，常见的做法是将靶向特定基因的大约21碱基长短的双链siRNAs(smallinterferingRNAs)，或者是45—50-mer的发夹结构RNA（smallhairpinRNA,shRNA）转染到细胞。此外，通过质粒表达siRNAs同样可以抑制特定基因的表达。1.1siRNA的转染将一种特殊构建的ｓｉＲＮＡ—对称性3′突出2nt的约21nt(nucleotide)siRNAs双链复合物通过阳离子脂质体可以转入哺乳动物细胞中。1.2shRNA转染引入细胞45—50-mer的发夹结构RNA（smallhairpinRNA,shRNA）转染到细胞。shRNA在细胞内会自动被加工成为siRNA，从而引发基因沉默或者表达抑制。1.3胞内表达siRNA体内载体合成siRNA,是最近迅速发展起来的新技术。它是2002年2月,由Patrick等首先报道的利用载体在细胞体内稳定地表达siRNA,从而抑制哺乳动物细胞靶基因表达的方法[1,2]。其基本思路如下:细胞内存在RNApolymeraseIII,它可以识别Ｕ6启动子,从而使启动子后的基因转录成ＲＮＡ。当模板连续出现3～5个“Ｔ”碱基时,转录就会终止。根据这一机制,可以设计一种能表达ＲＮＡ的质粒,其组成包括四部分:①常用质粒的基本序列;②Ｕ6启动子,位于克隆位点的上游;③克隆位点;④ＲＮＡｉ模板序列(ＤＮＡ)。这部分序列具有如下特点:含RNAi序列,对哺乳动物而言,通常为21-23个核苷酸；发卡结构环状部分,通常有4～7个核苷酸;靶序列的反向互补序列;3～5个核苷酸“T”。将具有如上结构的质粒导入细胞内,体内的RNApolymeraseIII就可以合成一条ＲＮＡ链,这条ＲＮＡ链可以通过两端的21个左右的核苷酸反向互补特性而形成发卡样双链结构,从而起到基因抑制作用。这种技术的使用,操作简便,成本低,与直接导入SiRNA相比,DNA质粒更易导入细胞内,而且质粒导入细胞后存在时间长且稳定,对靶基因的表达抑制效率高,便于进行较长时间的基因功能研究,因而近日来成为一种热门技术,Cythla等2002-05对载体进行了改进,使RNAi效率提高到99%以上[3]。他们的作法是,在上述载体的克降位点上游加入了人Ｕ6ＲＮＡ的前27个核苷酸,在克隆位点下游又加上一段能形成发卡样结构的核苷酸序列及转录终止信号poly(u)。据报道,这种改进的质粒大大增加了siRNA的转录效率及稳定性,同时对靶基因的抑制作用也大大增加,因而被认为是迄今报道的最完善的质粒载体。胞内表达siRNA，尽管细节各有不同，但载体大都是用RNA聚合酶I...
